(PDF) СТРУКТУРНЫЕ ОСОБЕННОСТИ УЗНАВАНИЯ РИБОСОМНЫХ РНК РИБОСОМНЫМИ БЕЛКАМИ
Рибосомные белки специфически узнают 3D структуру рРНК 279
37. Tishchenko, S., Nikonova, E.,
Kos tareva, O., Gabdulkhakov, A.,
Piendl, W., Nevskaya, N., Garber,
M., Nikonov, S. (2011) Structural
ana lysis of interdomain mobility in
ribosomal L1 proteins. Acta Crys tal
tlogr. Sect. D, 67, 1023–1027.
38. Nikulin, A., Eliseikina, I., Ti shchen-
ko, S., Nevskaya, N., Davy dova,
N., Platonova, O., Piendl, W., Sel-
mer, M., Liljas, A., Drygin, D., Zim-
mermann, R., Garber, M., and Niko-
nov, S. (2003) Structure of the L1
protuberance in the ribosome. Nat.
Struct. Biol., 10, 104–108.
39. Willumeit, R., Forthmann, S., Beck-
mann, J., Diedrich, G., Ratering, R.,
Stuhrmann, H.B., Nierhaus, K.H.
(2001) Localization of the protein L2
in the 50S subunit and the 70S E. coli
ribosome. J. Mol. Biol., 305, 167–177.
40. Diedrich, G., Spahn, C.M. T., Stelzl,
U., Schäfer, M.A., Wooten, T., Bochka-
riov, D.E., Cooperman, B.S., Traut,
R.R., Nierhaus, K.H. (2000) Riboso-
mal protein L2 is involved in the asso-
ciation of the ribosomal subunits, tRNA
binding to A and P sites and pep tidyl
transfer. EMBO J., 19, 5241–5250.
41. Cooperman, B.S., Wooten, T., Ro-
mero, D.P., Traut, R.R. Histidine 229
in protein L2 is apparently essential
for 50S peptidyl transferase activity.
Biochem. Cell Biol., 73, 1087–94.
42. Gao, H., Sengupta, J., Valle, M.,
Koro stelev, A., Eswar, N., Stagg, S.
M., Van Roey, P., Agrawal, R. K.,
Har vey, S. C., Sali, A., Chapman,
M.S., Frank, J. (2003) Study of the
structural dynamics of the E coli
70S ribosome using real-space re-
nement. Cell, 113, 789–801.
43. Uhlein, M., Weglohner, W. , Urlaub,
H., Wittmann-Liebold, B. (1998)
Functional implications of ribosomal
protein L2 in protein biosynthesis as
shown by in vivo replacement studies.
Biochem J., 331, 423–430.
44. Nowotny, V., Nierhaus, K.H. (1982)
Initiator proteins for the assembly
of the 50S subunit from Escherichia
coli ribosomes. Proc. Natl. Acad. Sci.
USA, 79, 7238–7242.
45. Petrov, A., Meskauskas, A., Dinman,
J.D. (2004) Ribosomal protein L3:
inuence on ribosome structure and
function. RNA Biol., 1, 59–65.
46. Pringle, M., Poehlsgaard, J., Vester,
B., Long, K.S. (2004) Mutations
in ribosomal protein L3 and 23S
ribosomal RNA at the peptidyl trans-
ferase centre are associated with
reduced susceptibility to tiamulin
in Brachyspira spp. isolates. Mol.
Microbiol., 54, 1295–1306.
47. Klitgaard, R.N., Ntokou, E., Nør-
gaard, K., Biltoft, D. , Hansen, L.H.,
Trædholm, N.M., Kongsted, J.,
Ves ter, B. (2015) Mutations in the
Bac terial Ribosomal Protein L3 and
Their Association with Antibiotic
Re sistance. Antimicrob. Agents Che
mother., 59, 3518–3528.
48. Urlaub, H., Kruft, V., Bischof, O.,
Müller, E.C., Wittmann-Liebold, B.
(1995) Protein-rRNA binding fea-
tures and their structural and func-
tio nal implications in ribosomes as
determined by cross-linking studies.
EMBO J., 14, 4578–4588.
49. Wower, I., Wower, J., Meinke, M.,
Brimacombe, R. (1981) The use of
2-iminothiolane as an RNA-protein
cross-linking agent in Escherichia
coli ribosomes, and the localization
on 23S RNA of sites cross-linked to
proteins L4, L6, L21, L23, L27 and
L29. Nucleic Acids Res., 9, 4285–4302.
50. Gabashvili, I.S., Gregory, S.T., Val-
le, M., Grassucci, R., Worbs, M.,
Wahl, M. C., Dahlberg, A.E., Frank,
J. (2001) The Polypeptide Tunnel
System in the Ribosome and Its Ga-
ting in Erythromycin Resistance Mu-
tants of L4 and L22. Mol. Cell, 8,
181–188.
51. Zaman, S., Fitzpatrick, M., Lindahl,
L., Zengel, J. (2007) Novel mutations
in ribosomal proteins L4 and L22
that confer erythromycin resistance
in Escherichia coli. Mol. Microbiol.,
66, 1039–1050.
Сколько человеку нужно рибосом для долгой жизни
Для жизнедеятельности организму требуется очень много «заводов», поэтому и рибосомных генов в клетке много — сотни копий. Причем у каждого человека — свое число копий РГ. Последние исследования говорят, что их количество тесно связано как с долгожительством, так и с механизмами развития разных заболеваний, в том числе шизофрении.
Представьте, что в городе-клетке случается ЧП: организм испытывает стресс, а стрессом может оказаться все что угодно — эмоциональная перегрузка, отравление, обострение заболевания. Чтобы справиться с этим, организм должен как можно быстрее начать менять комплекс белков, а для этого — утилизировать прежние заводы-рибосомы и создать новые.
Специалисты относят гены, кодирующие рибосомы, к так называемым генам домашнего хозяйства, потому что именно они поддерживают все важнейшие функции организма и работают в каждой клетке. Чтобы обеспечить только один цикл деления клетки, нужно около десяти миллионов новых рибосом! В состоянии стресса организм должен мобилизоваться, поменять комплекс белков, чтобы защитить себя и обеспечить скорейшее восстановление. Заводы-рибосомы должны быть моментально «разобраны», чтобы как можно быстрее их место заняли новые, способные вырабатывать белок, нужный в конкретный момент.
Справиться с такой задачей организму помогает большое количество копий рибосомных генов. Чем их больше, тем быстрее отстраиваются заводы-рибосомы; тем быстрее они налаживают выпуск продукции — белка; тем легче организму переносить стресс. Казалось бы, все просто. Но это не так.
Метод определения количества копий рибосомных генов — уникальная разработка лаборатории молекулярной биологии ФГБНУ «Медико-генетический научный центр имени академика Н. П. Бочкова» (МГНЦ).
Количество рибосомных генов у разных людей меняется в пределах от 200 до 700 копий. Исследователи предположили, что чем лучше человек восстанавливается после стресса, тем больше у него шансов дожить до преклонных лет. Известно, что в России средняя продолжительность жизни в 2016–2017 годах составила 72 года.
Научные работники лаборатории молекулярной биологии ФБГНУ МГНЦ проанализировали, как меняется количество копий рибосомных генов в геномах достаточно больших групп людей различного возраста. В исследовании участвовало около 650 человек, из них 545 мужчин и 106 женщин. Оказалось, что в группе людей, достигших возраста средней продолжительности жизни и выше, это 72–91 год, интервал варьирования числа копий РГ в геноме значительно сужается с обеих сторон и составляет 270–540 копий. Выборка составила 126 человек.
— То есть дожить до преклонного возраста могут только люди со средним количеством рибосомных генов в геноме — не слишком высоким и не слишком низким,— рассказывает доктор биологических наук, заведующая лабораторией молекулярной биологии ФГБНУ МГНЦ Светлана Костюк.— Очевидно, что, если в организме оказывается слишком мало, меньше 270, копий рибосомных генов, он не может обеспечить себя нужным количеством рибосом, а значит, не в состоянии и оперативно менять белковые комплексы.
Такой организм оказывается не способным справляться со стрессом, в том числе с факторами, ускоряющими старение. Но и слишком много рибосомных генов — это, оказывается, тоже плохо!
— Ничего странного в этом нет. В геноме все должно быть сбалансировано,— объясняет научный сотрудник лаборатории молекулярной биологии ФГБНУ МГНЦ, кандидат биологических наук Лев Пороховник.— Достаточно вспомнить, что такое тяжелое заболевание, как синдром Дауна, возникает не от «поломки» какого-то гена, а оттого что вместо двух копий 21-й хромосомы клетки больного несут три копии.
Слишком много копий рибосомных генов оказалось вовсе не гарантией рекордной стрессоустойчивости и продолжительности жизни. Это подтвердило новое исследование лаборатории молекулярной биологии, поддержанное Российским научным фондом.
Шизофрения остается одним из самых загадочных заболеваний. В России среди всех пациентов, наблюдающихся по поводу патологии психики, удельный вес больных шизофренией составляет 16%. Этот диагноз в значительной степени обусловлен изменениями генома пациентов, но начало болезни зависит от факторов окружающей среды, стресса, перенесенного человеком. ФГБНУ МГНЦ совместно с врачами-психиатрами из психиатрической клинической больницы №1 им.
Неожиданно оказалось, что у пациентов с диагнозом «шизофрения» значительно повышено количество копий рибосомных генов в геноме. Это вовсе не значит, что каждый человек с большим числом рибосомных генов рано или поздно попадет к психиатрам. Однако каждый человек, у которого диагностирована шизофрения, в своих клетках имеет большое количество копий рибосомных генов. У обладателей небольшого количества копий рибосомных генов шизофрения не развивается: даже в весьма большой выборке из 170 пациентов исследователи не нашли ни одного пациента с малым количеством копий рибосомных генов. А среднее количество генов у пациентов с диагнозом превышало среднее количество в контрольной выборке здоровых людей в полтора раза! В чем причина этого, ученые пока могут только предполагать.
— Если ученые не понимают, в чем причина того или иного явления, первым делом они ищут аналогичное или хотя бы близкое, которое уже исследовано достаточно глубоко,— рассказывает Лев Пороховник. — С шизофренией можно сопоставить детский аутизм и расстройства аутистического спектра, при которых наблюдаются отчасти аналогичные симптомы, хотя это, безусловно, разные виды патологии.
Причина аутизма чаще всего остается неизвестной. Тогда говорят об идеопатическом случае. Однако встречаются и синдромальные формы, то есть когда у ребенка есть известное заболевание, синдром, и именно оно становится первопричиной развития аутизма. Синдромальные формы аутизма — это ключ к пониманию детского аутизма в целом, потому что механизм этого заболевания изучен даже на молекулярном уровне.
— Около 15 лет тому назад обнаружили поразительный факт: практически при всех случаях синдромального аутизма причиной является «отказ» механизма контроля синтеза белка, который, как известно, проходит на рибосомах. У аутистов нет механизма, который бы сдерживал белковое производство. Из-за этого у пациентов синтезируется излишнее количество некоторых специфических белков в отростках нейронов. В результате нейронных связей у детей с диагнозом «аутизм» больше, чем должно быть в норме. Аутизм — это не недостаток, а избыток серого вещества, если выражаться образно. Этим и объясняются удивительные способности некоторых пациентов: сверхпамять, мгновенное умножение шестизначных чисел в уме, математические способности и так далее.
Исследователи задались вопросом: не может ли избыток рибосомных генов воспроизводить примерно ту же ситуацию, которая возникает при синдромальном аутизме, только у взрослых пациентов? Если продолжить сравнение рибосомы с заводом или фабрикой, то при синдромальном аутизме каждое «предприятие» работает в три смены, а при шизофрении «заводов» просто становится много.
Итог один: перепроизводство белковой продукции. Конечно, повышенное количество рибосомных генов не является единственной причиной возникновения и развития шизофрении, это лишь одно из слагаемых. Должно совпасть несколько факторов, каждый из которых в отдельности не способен привести к заболеванию. Однако научные работники уже внесли немалый вклад в изучение одного из самых загадочных заболеваний, доказав, что при шизофрении существует генетическая предрасположенность к увеличению синтеза белка. В этом направлении предстоит дальнейшая работа.
§14. Клеточный центр. Рибосомы
1. Чем являются клеточный центр и рибосомы?
Клеточными включениями, немембранными органоидами, мембранными органоидами.
Клеточный центр и рибосомы являются немембранными органоидами.
2. Как устроен клеточный центр?
Клеточный центр находится вблизи ядра и образован двумя полыми цилиндрами – центриолями. Каждая центриоль состоит из девяти триплетов микротрубочек (9 × 3), связанных специальными белками в единую систему. Центриоли располагаются перпендикулярно друг другу. От них в разных направлениях отходят многочисленные микротрубочки.
3. Почему клеточный центр называют «центром организации микротрубочек»?
Этот органоид запускает сборку микротрубочек, является центром их «производства». К центриолям транспортируется белок тубулин, из молекул которого собираются микротрубочки. Далее они направляются в разные участки клетки, где и выполняют свои функции. При подготовке клетки к делению происходит удвоение центриолей. Во время деления они попарно расходятся к противоположным полюсам клетки и обеспечивают формирование микротрубочек веретена деления.
4. Охарактеризуйте химический состав, строение и функцию рибосом.
Рибосомы – немембранные органоиды, осуществляющие синтез белка. Они очень малы (15–30 нм) и содержатся как в эукариотических клетках, так и в клетках прокариот. Количество рибосом в разных типах клеток составляет от нескольких тысяч до миллионов.
Рибосомы состоят из двух субъединиц – большой и малой.
5. Какие из перечисленных ниже белков синтезируются на свободных рибосомах, а какие — на рибосомах, прикреплённых к поверхности эндоплазматической сети или ядра клетки? Ответ обоснуйте.
а) Инсулин в клетках поджелудочной железы.
б) Белки-рецепторы нейромедиаторов в нервных клетках.
в) Гемоглобин в молодых эритроцитах.
г) Тубулин в клетках росткового слоя эпидермиса кожи.
д) Фибриноген в клетках печени.
На свободных рибосомах синтезируются следующие белки: в) гемоглобин в молодых эритроцитах, г) тубулин в клетках росткового слоя эпидермиса кожи.
На рибосомах, прикреплённых к поверхности ЭПС или ядра клетки синтезируются: а) инсулин в клетках поджелудочной железы, б) белки-рецепторы нейромедиаторов в нервных клетках, д) фибриноген в клетках печени.
Свободные рибосомы синтезируют белки, необходимые для нужд самой клетки, а рибосомы, прикреплённые к ЭПС и оболочке ядра, синтезируют белки, предназначенные для выведения из клетки, а также мембранные белки. Гемоглобин и тубулин выполняют свои функции внутри клеток и не подлежат выведению из них. Инсулин и фибриноген выводятся из клеток, поступают в межклеточную (тканевую) жидкость, а затем – в плазму крови, где эти белки и функционируют. Рецепторы нейромедиаторов – мембранные белки, значит, они синтезируются на рибосомах, связанных с мембранами ЭПС или ядра.
6. Как вы думаете, где содержится больше рибосом — в клетках волосяных луковиц или в клетках жировой ткани? Почему?
Больше рибосом содержится в клетках волосяных луковиц, поскольку им необходимо синтезировать большое количество кератина и других белков, входящих в состав волос. Клетки жировой ткани являются своеобразными хранилищами липидов и не специализируются на синтезе белков.
7*. Известно несколько групп веществ, способных связываться с рибосомами прокариот и нарушать их нормальное функционирование. Важно то, что эти вещества не оказывают подобного действия на рибосомы эукариот. Где находят применение такие вещества? В связи с чем?
Такие вещества широко применяются в медицине и ветеринарии для лечения бактериальных инфекций, т.е. используются в качестве антибиотиков (тетрациклины, стрептомицин, гентамицин, эритромицин и многие другие). Они специфично связываются с рибосомами бактерий и блокируют синтез бактериальных белков, при этом не нарушая процессы синтеза белков в клетках человека и животных.
* Задания, отмеченные звёздочкой, предполагают выдвижение учащимися различных гипотез. Поэтому при выставлении отметки учителю следует ориентироваться не только на ответ, приведённый здесь, а принимать во внимание каждую гипотезу, оценивая биологическое мышление учащихся, логику их рассуждений, оригинальность идей и т. д. После этого целесообразно ознакомить учащихся с приведённым ответом.
Дашков М.Л.
Сайт: dashkov.by
Вернуться к оглавлению
< Предыдущая | Следующая > |
---|
Рибосомы
Рибосомы — органеллы белкового синтеза, состоят из рРНК и белка (оттуда название, от лат. Soma — тело). Находятся в прокариотических и эукариотических клетках, за исключением эритроцитов млекопитающих. 3 Учитывая массу и распространения различают два вида рибосом:
(1) малые рибосомы, которые содержатся у прокариот, а также в пластидах и митохондриях эукариот. Они имеют массу в среднем около 2,5 х106 дальтонов (d) и постоянную седиментации Сведберга 70s. Такие рибосомы не подключен к мембранам и имеют диаметр 15 нм;
(2) большие рибосомы, которые содержатся в цитоплазме клеток эукариотического типа. Их масса составляет 4,8 х106 d, и постоянная седиментации 80s. Такие рибосомы диаметром около 22 нм, обычно связаны с мембранами эндоплазматической сети и составляют вместе с ней гранулярную эндоплазматическая сеть.
Структурная организация рибосом всех названных групп принципиально одинакова. Рибосома состоит из двух субъединиц (субчастицы): большой и малой. В рибосомах эукариот они константу седиментации Сведберга 60s i 40s. В нативном виде не все субчастицы соединяются в целые рибосомы, а находятся в динамическом равновесии: 80s « 60s +40 s.
Большая субъединица рибосомы имеет вид треугольника, трапеции или ковша с диаметром в 15-18 нм, меньше — напоминает телефонную трубку с диаметром 14-16 нм. Присоединяются обе субъединицы поперечными сторонами с помощью ионов магния (Mg2 +), а между ними остается узкая щель.
Химическая организация рибосом. Рибосомы содержат виcокополимерну рибосомальной РНК (рРНК) и белок: 40-60 % рРНК и 60-40 % белка. В рибосомах находится около 80-90 % всей РНК клетки. Каждая субъединица содержит по одной или две молекуле рРНК в виде клубка или тяжа, плотно упакованного белками, создавая рибонуклеопротеид (РНП). При снижении концентрации ионов магния в растворе может наступить изменение конформации РНК и развертывания тяжа. Кроме этого, в рибосомах обнаружены катионы кальция.
Рибосомальные РНК имеют характерную вторичную структуру, создается за счет особых участков — шпилек, образованных комплементарно связанными нуклеотидами. В состав рибосом входят полиамины (диаминопропан, кадаверин, путресцин). Структурные белки рРНК имеют щелочные свойства, содержат оснóвни аминокислоты, а ферментативные — кислые.
Полирибосомы (сокращенно, полисомы, от греч. Poli — много и soma — тело) — это комплекс, образованный из иРНК и рибосомы (от 5 до 70), нанизанных на нить информационной РНК (иРНК) толщиной 1,5 нм, которая обеспечивает передачу генетической информации с ДНК на синтез белка. Нетранслюючи, неработающие рибосомы постоянно обмениваются субъединицами. Собираются только в момент работы и формируют полисомы. Итак, полисомы — это структуры временного характера, связанные с периодичностью процессов синтеза белка (рис. 2.19).
Локализация рибосом (полисом). Рибосомы могут располагаться в цитоплазме клетки одиночно, тогда они функционально неактивны. Сбор рибосом на иРНК происходит в начале синтеза белка. Полисомы могут быть свободно размещенными в цитоплазме или прикрепленными к внешней поверхности эндоплазматической сети и кариолемы. Тогда имела субъединица рибосомы соединяется с иРНК, а большая может присоединяться к мембранам эндоплазматической сети. После завершения синтеза одного полипептида рибосомы могут вновь диссоциировать.
Полисомы НЕ агрегированные с мембраной в клетках с недостаточно развитой эндоплазматической сетью (овоциты), размещаются в один ряд или образуют розетки или спирали. Ядерные рибосомы находятся в сочетании с нитевидными структурами, из которых состоят окончательные хромосомы в интерфазном ядре. Рибосомы обнаружены также в митохондриях и пластидах.
Количество рибосом (полисом) зависит от метаболической активности клетки. Особенно много полисом есть в клетках, которые быстро делятся, и в таких, продуцирующие большое количество белков на экспорт. Количество рибосом в таких клетках может достичь 50 тысяч, что составляет около 25 % массы всей клетки (например, в печеночной клетке).
Функции рибосом — трансляция, то есть считывания кода матричной (инфоромационно) РНК и сбора полипептида. Путем введения меченых аминокислот выявлено, что в рибосомах происходит синтез белков. Полипептидные молекулы белка синтезируются таким образом, что определенные аминокислоты в рибосоме соединяются друг с другом в соответствующей последовательности. Поэтому информационная РНК, которая в виде кодонов (триплетов), кодирует порядок размещения аминокислот, должна перемещаться по рибосоме по мере присоединения очередной аминокислоты к предыдущей. Чем больше рибосом содержит полисома, тем больше молекул полипептидов будет синтезироваться на ней одновременно. На малой субъединицы рибосомы в месте ее контакта с большой находится иРНК — связывающая участок, а также участок, содержащее аминоацил — тРНК. Между двумя участками рибосомы находится центр, который катализирует образование пептидных связей.
Важную роль в синтезе белка играет транспортная РНК (синонимы: тРНК, растворимый РНК, или РНК- переносчик), функция которой состоит в том, чтобы из фонда аминокислот, образованных клеткой, выбрать «нужную» и вместе с ней направиться к рибосомы. Транспортная РНК имеет вид листочка (рис. 2.20), черешок которого в каждой тРНК имеет такой же триплет нуклеотидов — ЦЦА. Этот участок служит для прикрепления аминокислоты, образование аминоацил — тРНК. Второй участок » познает » » свою» аминокислоту, которая и прикрепляется к первому участку тРНК. Третий участок — это антикодон (триплет нуклеотидов), с помощью которого тРНК, нагруженная аминокислотой, помещает ее на соответствующее место — кодон в иРНК, спарюючись с ним, по принципу комплементарности. Четвертый участок тРНК узнает рибосому на иРНК и прикрепляется к ней.
Синтез белка на рибосомах начинается с прикрепления рибосомы (ее малой субъединицы) к определенному участку иРНК. Дальше в рибосому вступает тРНК с аминокислотой (аминоацил — тРНК) и своим антикодоном (триплетом нуклеодитив) контактирует с комплементарным ему кодоном на иРНК. Тогда тРНК отсоединяется и рибосома вместе с аминокислотой перемещается на следующую позицию (движение иРНК и рибосомы является встречным). В рибосоме предыдущей аминокислоты присоединяется следующая в составе аминоацил — тРНК путем образования пептидной связи. На каждом этапе происходит присоединение к рибосомы аминоацил — тРНК опять же по принципу комплементарности — антикодон тРНК к соответствующему кодона иРНК. Как только аминокислоты соединяются между собой, тРНК отпадает. И так процесс синтеза белковой цепочки продолжается и завершается освобождением олиго — или полипептида от рибосомы. Рибосома, которая закончила уборку пептидной цепочки диссоциирует (разъединяется) на субъединицы и может вновь присоединяться на освободившееся место в иРНК.
Считают, размещенные свободно в гиалоплазме полисомы синтезируют белок для нужд самой клетки. Прикрепленные к мембранам гранулярной эндоплазматической сети полисомы синтезируют белок на экспорт для экзоцитоза, т.е. выведение его за пределы клетки (клетка печени синтезирует белки плазмы крови, В- лимфоциты и плазмоциты — g — глобулины). При росте молодых клеток количество рибосом увеличивается. В процессе метаболизма белки цитоплазмы постоянно обновляются, синтезируясь на полисомах. Рибосомы осуществляют также синтез специальных белков, таких как гемоглобин у предшественников эритроцитов.
Образование рибосом. Рибосомы у эукариот синтезируются в ядрышке. Матрицей для рРНК есть участки ДНК. Выделяют несколько этапов образования рибосом с соответствующими названиями: (1) еосомы (с греч. Eos — ранняя звезда, начало) образуются на начальном этапе, когда в ядрышке на ДНК синтезируется только рРНК; (2) неосомы (с греч. Neos — новый) — это комплексы рРНК — белок, подвергающихся многоступенчатую процедуре созревания и как готовые субъединицы попадают в цитоплазму и там при участии Mg2 + на иРНК соединяются в (3) рибосомы. Нанизываясь на нить иРНК, образуют полирибосомы (полисомы). В прокариот рибосомы образуются в цитоплазме в результате простой агрегации компонентов.
Таким образом, формирование полисом происходит при участии иРНК, которая синтезируется в ядре на еухроматинових участках хромосом и через поровые комплексы попадает в цитоплазму. На ней и нанизываются рибосомы с участием ионов магния. Так формируются комплексы, синтезирующие белок.
Единицы живого: Рибосомы
РИБОСОМА (от «рибонуклеиновая кислота» и греч. «сома» – тело), органоид, синтезирующий белки. Присутствует в клетках всех организмов, как эукариот, так и прокариот. Представляет собой сферическую частицу диаметром ок. 20 нм, состоящую из двух субчастиц, которые могут разъединяться и вновь объединяться. Структурный каркас рибосомы образован молекулами рибосомальной РНК (р-РНК) и связанными с ними белками. В клетках эукариот рибосомы формируются в ядрышке, где на ДНК синтезируется р-РНК, к которой затем присоединяются белки. Субчастицы рибосомы выходят из ядра в цитоплазму, и здесь завершается формирование полноценных рибосом. В цитоплазме рибосомы свободно находятся в цитоплазматическом матриксе (гиалоплазме) или прикрепляются к внешним мембранам ядра и эндоплазматической сети. Свободные рибосомы синтезируют белки для внутренних нужд клетки.
Схема строения рибосомы, сидящей на мембране эндоплазматнческой сети:
1 — малая субъединица;
2 — иРНК;
3 — аминоацил — тРНК;
4 — аминокислота;
5 — большая субъединица;
6 — мембрана эндоплазматической сети;
7 — синтезируемая полипептидная цепь.
Каждая рибосома состоит из двух субчастиц-большой и малой. Рибосомы состоят из примерно равных (по массе) количеств РНК и белка (т.е. представляют собой рибонуклеопротеиновые частицы). Входящая в их состав РНК, называемая рибосомной РНК (рРНК), синтезируется в ядрышке. Вместе те и другие образуют сложную трехмерную структуру, обладающую способностью к самосборке.
Во время синтеза белка на рибосомах аминокислоты, из которых строится полипептидная цепь, последовательно одна за другой присоединяются к растущей цепи. Рибосома служит местом связывания для молекул, участвующих в синтезе, т. е. таким местом, где эти молекулы могут занять по отношению друг к другу совершенно определенное положение. В синтезе участвуют: матричная РНК (мРНК), несущая генетические инструкции от ядра клетки, транспортная РНК (тРНК), доставляющая к рибосоме требуемые аминокислоты, растущая полипептидная цепь, а также ряд факторов, ответственные за инициацию, элонгацию и терминацию цепи.
В эукариотических клетках отчетливо видны две популяции рибосом — свободные рибосомы и рибосомы, присоединенные к эндоплазматическому ретикулуму. Строение тех и других идентично, но часть рибосом связана с эндоплазматическим ретикулоумом через белки, которые они синтезируют. Такие белки обычно секретируются. Примером белка, синтезируемого свободными рибосомами, может служить гемоглобин, образующийся в молодых эритроцитах.
В процессе синтеза белка рибосома перемещается вдоль нитевидной молекулы мРНК. Процесс идет более эффективно, когда вдоль мРНК перемещается не одна рибосома, а одновременно много рибосом, напоминающих в этом случае бусины на нитке. Такие цепи рибосом называются полирибосомами или полисомами. На эндоплазматическом ретикулуме полисомы обнаруживаются в виде характерных завитков.
Рибосомный синтез белка-многоэтапный процесс. Первая стадия (инициация) начинается с присоединения матричной РНК (мРНК) к малой рибосомной субчастице, не связанной с большой субчастицей. Характерно, что для начала процесса необходима именно диссоциированная рибосома. К образовавшемуся т. наз. инициаторному комплексу присоединяется большая рибосомная субчастица. В стадии инициации участвуют спец. инициирующий кодон (см. Генетический код), инициаторная транспортная РНК (тРНК) и специфич. белки (т. наз. факторы инициации). Пройдя стадию инициации, рибосома переходит к последоват. считыванию кодонов мРНК по направлению от 5′- к 3′-концу, что сопровождается синтезом полипептидной цепи белка, кодируемого этой мРНК (подробнее о механизме синтеза полипептидов см. в ст. Трансляция). В этом процессе рибосома функционирует как циклически работающая мол. машина. Рабочий цикл рибосомы при элонгации состоит из трех тактов: 1) кодонзависимого связывания аминоацил-тРНК (поставляет аминокислоты в рибосому), 2) транспептидации-переноса С-конца растущего пептида на аминоацил-тРНК, т.е. удлинения строящейся белковой цепи на одно звено, 3) транслокации-перемещения матрицы (мРНК) и пептидил-тРНК относительно рибосомы и переход рибосомы в исходное состояние, когда она может воспринять след. аминоацил-тРНК. Когда рибосома достигнет специального терминирующего кодона мРНК, синтез полипептида прекращается. При участии специфич. белков (т. наз. факторов терминации) синтезир. полипептид освобождается из рибосомы.
После терминации рибосома может повторить весь цикл с др. цепью мРНК или др. кодирующей последовательностью той же цепи.
Схема синтеза полипептидной цепи полирибосомой: I-начал о синтеза, II-окончание синтеза; а-мРНК, б-рибосома, в-большая субъединица рибосомы, г-малая субъединица рибосомы.
В клетках с интенсивной секрецией белка и развитым эндоплазматич. ретикулумом значит. часть цитоплазматической рибосомы прикреплена к его мембране на пов-сти, обращенной к цитоплазме. Эти рибосомы синтезируют полипептиды, к-рые непосредственно транспортируются через мембрану для дальнейшей секреции. Синтез полипептидов для внутриклеточных нужд происходит в осн. на свободных (не связанных с мембраной) рибосомах цитоплазмы. При этом транслирующие рибосомы не равномерно диспергированы в цитоплазме, а собраны в группы. Такие агрегаты рибосом представляют собой структуры, где мРНК ассоциирована со многими рибосомами, находящимися в процессе трансляции; эти структуры получили назв. полирибосом или полисом.
При интенсивном синтезе белка расстояние между рибосомами вдоль цепи мРНК в полирибосоме м. б. предельно коротким, т.е. рибосомы находятся почти вплотную друг к другу. Рибосомы, входящие в полирибосомы, работают независимо и каждая из них синтезирует полную полипептидную цепь.
Рибосома – это тот самый рабочий, который претворяет генеральный план в жизнь, изготовляя по лекалам ДНК соответствующие белки.
это 📕 что такое РИБОСОМА
РИБОСОМА(от «рибонуклеиновая кислота» и сома), органоид клетки, осуществляющий биосинтез белка. Представляет собой частицу сложной формы диам. ок. 20 нм. Р. состоит из 2 неравных субчастиц (субъединиц) — большой и малой, на к-рые может диссоциировать. Различают 2 осн. типа Р.— эукариотные (с константами седиментации: целой Р.— 80 S, малой субчастицы — 40 S, большой — 60 S) и прокариотные (соответственно 70 S, 30 S и 50 S). Кроме того, в митохондриях и хлоропластах содержатся мелкие Р. (константа седиментации 55 S— 70 S), осуществляющие автономный синтез белка. В бактериальной клетке содержится 104 — 105 Р. В состав Р. входит рРНК (3 молекулы у прокариот и 4 — у эукариот) и белки. Молекулы рРНК составляют 50—63% массы Р. и образуют её структурный каркас. Каждый из белков Р. представлен в ней одной молекулой, т. е. на одну Р. приходится неск. десятков разных белков (ок. 55 для Р. прокариот и ок. 100 для Р. эукариот). Большинство белков специфически связано с определ. участками рРНК. Нек-рые белки — т. н. факторы инициации (начала), элонгации (продолжения) и терминации (окончания) — входят в состав Р. только во время биосинтеза белка. В отсутствие биосинтеза белка субчастицы Р. находятся в динамич. равновесии с целыми Р. При начале трансляции с малой субчастицей связываются иРНК, формилметионил-тРНК и факторы инициации; затем этот комплекс присоединяется к большой субчастице. Связь оказывается очень прочной и исчезает только после терминации. Ассоциация выделенных субчастиц Р. осуществляется только при наличии двухвалентных катионов, в физиол. условиях в ней участвует Mg2+.
P. имеет специфич. места для присоединения аминоацил-тРНК, пептидил-тРНК, места образования пептидной связи и гидролиза гуанозинтрифосфата, что обеспечивает постепенное скольжение Р. вдоль молекулы иРНК при синтезе полипептидной цепи. Одну молекулу иРНК могут одновременно транслировать неск. Р., образуя комплекс — полирибосому (полисому). Кол-во полирибосом в клетке указывает на интенсивность биосинтеза белка.
В эукариотных клетках часть Р. связана спец. белками большой субчастицы с мембранами эндоплазматич. сети. Эти Р. синтезируют в осн. белки, к-рые поступают в комплекс Гольджи и секретируются клеткой. Р; расположенные в гиалоплазме, синтезируют белки для собств. нужд клетки. У эукариот Р. образуются в ядрышке. На ядрышковой ДНК синтезируются предшественники рРНК, к-рые покрываются поступающими из цитоплазмы рибосомальными белками, расщепляются до нужных размеров и формируют рибосомные субчастицы, к-рые выходят в цитоплазму. Полностью сформированных Р.
в ядре нет. Осн. массу клеточной РНК составляет рРНК. Она обусловливает базофильную окраску ядрышка и участков эргастоплазмы (напр., Ниссля вещества в нейронах).
Схема строения рибосомы, сидящей на мембране эндоплазматнческой сети: 1 — малая субъединица; 2 — иРНК; 3 — аминоацил — тРНК; 4 — аминокислота; 5 — большая субъединица; 6 — мембрана эндоплазматической сети; 7 — синтезируемая полипептидная цепь.
.(Источник: «Биологический энциклопедический словарь.» Гл. ред. М. С. Гиляров; Редкол.: А. А. Бабаев, Г. Г. Винберг, Г. А. Заварзин и др. — 2-е изд., исправл. — М.: Сов. Энциклопедия, 1986.)
рибосо́ма
(от «рибонуклеиновая кислота» и греч. «сома» – тело), органоид, синтезирующий белки. Присутствует в клетках всех организмов, как эукариот, так и прокариот. Представляет собой сферическую частицу диаметром ок. 20 нм, состоящую из двух субчастиц, которые могут разъединяться и вновь объединяться. Структурный каркас рибосомы образован молекулами рибосомальной РНК (р-РНК) и связанными с ними белками. В клетках эукариот рибосомы формируются в ядрышке, где на ДНК синтезируется р-РНК, к которой затем присоединяются белки. Субчастицы рибосомы выходят из ядра в цитоплазму, и здесь завершается формирование полноценных рибосом. В цитоплазме рибосомы свободно находятся в цитоплазматическом матриксе (гиалоплазме) или прикрепляются к внешним мембранам ядра и эндоплазматической сети. Свободные рибосомы синтезируют белки для внутренних нужд клетки. Рибосомы на мембранах образуют комплексы – полирибосомы, которые синтезируют белки, поступающие через эндоплазматическую сеть в аппарат Гольджи и затем секретируемые клеткой. Количество рибосом в клетке зависит от интенсивности биосинтеза белка – их больше в клетках активно растущих тканей (меристем растений, зародышей и т.п.). В хлоропластах и митохондриях есть свои собственные мелкие рибосомы, они обеспечивают этим органоидам автономный (независимый от ядра) биосинтез белков (см. Трансляция).
.(Источник: «Биология. Современная иллюстрированная энциклопедия.» Гл. ред. А. П. Горкин; М.: Росмэн, 2006.)
Синонимы:
органелла
Впервые создана искусственная рибосома
В ИзбранноеБиологи создали первый в истории человечества искусственный аналог рибосомы – ключевой части клетки, отвечающей за сборку молекул белков, и научили ее реагировать на не существующие в природе сигналы.
Международный коллектив молекулярных биологов впервые в истории человечества создал искусственный аналог рибосомы – ключевой части клетки, отвечающей за сборку молекул белков, и научил ее использовать не существующие в природе аминокислоты.
Рибосомы – главная внутриклеточная фабрика белка. Структура этих органоидов в общих чертах была известна давно, однако никто не знал, как можно заменить их молекулярной машиной. Создать специализированную рибосому с нуля для производства экзотических полипептидов – и вовсе казалось задачей отдалённого будущего. Каждая рибосома состоит из двух субъединиц, имеющих различную массу. Для синтеза белка обе субъединицы объединяются и скользят вдоль матричной РНК, выполняя сборку полипептида по записанной на ней программе.
В ролике ниже мРНК представлена жёлтой нитью. Она выделяется через поры ядра в цитоплазму клетки. Там к ней сначала присоединяется малая субъединица рибосомы (светло-синяя), а затем – большая (фиолетовая). К образовавшемуся комплексу поступают молекулы аминоацил-тРНК (зелёные) поставляющие разные аминокислоты для синтеза белка. Вскоре от рибосомы отделяется красная нить – синтезированный полипептид.
Искусственная рибосома, получившая название Ribo-T, устроена немного иначе. Если бы её сделали также состоящей из двух частей, то синтетические субъединицы смогли бы перемещаться по матриксу эндотелия и вступать в конкурентные отношения с естественными, блокируя их. В итоге клетка просто погибла бы, утратив способность синтезировать белки.
Поэтому авторы исследования решили заранее объединить субъединицы искусственной рибосомы, оставив между ними пространство, достаточное для скольжения матричной РНК. Такая иммобилизованная структура демонстрирует менее впечатляющие результаты по скорости, но главное – она работает внутри живой клетки E.coli. Бактерии выживают и продолжают синтезировать заданный белок даже после замены всех исходных рибосом синтетическими.
«Скорость биосинтеза белка на Ribo-T получается примерно вдвое ниже, чем у естественных рибосом, но структура последних совершенствовалась на протяжении миллиардов лет эволюции, а нашей разработке всего год», – комментирует соавтор исследования Александр Мэнкин (Alexander Mankin).
С начала восьмидесятых годов прошлого века для промышленного синтеза инсулина, соматотропина, интерферонов и других сложных белков используются бактерии (преимущественно E. Coli) с модифицированным геномом. При помощи искусственной рибосомы авторы рассчитывают изготавливать любые белки ещё проще.
Пока каждая Ribo-T способна синтезировать только протеины определённого класса, но для уровня доказательства концепции этого более чем достаточно. Следующим этапом развития биотехнологий будет создание универсальной синтетической рибосомы, способной выполнять сборку любых белков на заказ. Это могут быть компоненты с любой биологической активностью – не содержащие возбудителя безопасные вакцины, пептидные гормоны, компоненты селективных лекарств, новых косметических средств и пищевых продуктов.
«В своей работе авторы преодолели основное препятствие для создания полностью синтетических рибосом с заданными свойствами, – отмечает научный сотрудник Лос-Аламосской национальной лаборатории Карисса Санбонмацу (Karissa Sanbonmatsu). – они заложили основу для драматических изменений».
Схожую оценку даёт и биолог Йельского университета Фаррен Айзекс (Farren Isaacs): «Это исследование станет ключом для производства совершенно новых классов экзотических протеинов», – говорит он в интервью изданию The Verge.
Год назад в научно-исследовательском институте Скриппса (TSRI) был создан новый генетический алфавит с парой дополнительных кодирующих молекул, не встречающихся в природе. Теперь его можно опробовать на искусственной рибосоме.
Получаемые до сегодняшнего дня рекомбинантные белки были полностью идентичны образующимся естественным путём. Они всегда содержали остатки стандартного набора из двадцати или менее L-альфа-аминокислот. Сочетая дополненный генетический код с возможностями искусственных рибосом, теоретически можно запустить биосинтез 172 аминокислот и создавать в промышленных масштабах абсолютно другие белки.
Как и любая научная разработка, искусственные рибосомы могут стать технологией двойного назначения. Если решить задачу их доставки в клетки живого организма, то Ribo-T можно будет использовать для лечения отравлений рицином. Этот белковый яд не имеет специфических антидотов. Он разобщает субъединицы рибосом, блокируя биосинтез белка. Искусственная рибосома уже сейчас устойчива к воздействию рицина, поскольку её субъединицы изначально связаны между собой.
С другой стороны, с помощью Ribo-T могут быть синтезированы новые токсины – абсолютно неизвестные потенциальному противнику и гораздо более подходящие для диверсий, чем рицин и другие природные яды.
Исследование опубликовано в Nature
Рибосомы — обзор | ScienceDirect Topics
Инактивация рибосом.
Ингибирующие рибосомы белки (RIP) являются противовирусными веществами, поскольку они ингибируют синтез белка, блокируя заключительные фазы внутриклеточного развития вируса. RIP специфически инактивируют рибосомы, что приводит к блокированию синтеза белка в фазе элонгации. Первичная структура RIP, выделенных из разных источников, в высокой степени гомологична, что позволяет сделать вывод о том, что ингибирующая активность данных пептидов в определенной степени коррелирует с первичной структурой их активных центров, ответственных за связывание рибосом.
Первоначально предполагалось, что RIP неактивны в гомологичных рибосомах. Однако низкая рибосомная активность лакоса ( Phytolacca americana ) в экспериментах по внеклеточной трансляции привела к открытию того, что рибосомы лакоса фактически инактивируются RIP лакома (PAP-1) во время их высвобождения. Другие растительные рибосомы также блокируются действием собственного RIP в сходных условиях. Однако следует отметить, что рибосомы лаконоса еще достаточно устойчивы к добавлению собственных РИП (РАР-1) и гораздо более восприимчивы к действию РИП, выделенных из других растений.Однако тритин, RIP пшеницы, не инактивирует рибосомы пшеницы, поэтому изолированные рибосомы пшеницы сохраняют высокую активность.
Полученные к настоящему времени экспериментальные данные позволяют заключить, что РИП обладают специфической активностью по отношению к рибосомам, выделенным из разных видов растений. По-видимому, рибосомы обладают определенными структурными особенностями, которые могут распознаваться или не распознаваться различными РИП. Однако механизмы функционирования этих белков не так просты: имеются данные, что РАР-С (РИП из семян лакомства) ингибирует рост клеток моркови в жидкой культуре, тогда как та же концентрация РАР-1 стимулирует рост клеток риса.
Временной интервал противовирусной активности достаточно узок, поэтому противовирусную активность большинства РИП проверяют путем инокуляции растений смесью этих белков и вирусным препаратом или препаратом вирусной РНК. Обработка растений РИП через некоторое время после инокуляции не предотвратит развитие вирусной инфекции. Например, защитный эффект не может быть обнаружен, если применять РИП лакки (РАП-1) через 30–50 минут после инокуляции протопластов табака вирусом табачной мозаики (ВТМ).Следовательно, RIP активны только на очень ранних стадиях жизненного цикла вируса. Хорошо известно, что рибосомы хозяина могут связывать вирусную РНК практически сразу после того, как РНК-вирус потерял свою оболочку. Возможно, комплекс трансляции (вирусная РНК–рибосома) уже невосприимчив к действию РИП, и пока этот комплекс существует, РИП неактивны.
Регулирующая рука в формировании рибосом — ScienceDaily
Рибосомы, которые используют фиксированную генетическую программу для производства клеточных белков, также формируются в соответствии со строгим иерархическим планом.Применяя междисциплинарный подход, исследовательские группы профессора доктора Эда Хёрта из Центра биохимии Гейдельбергского университета (BZH) и профессора доктора Андре Хоэлца из Калифорнийского технологического института (Калифорнийский технологический институт) в Пасадене (США) расшифровали механизм, который регулирует этот процесс. Они обнаружили ранее неизвестный белок, который регулирует процессы в клеточном ядре, которые позволяют клетке включать рибосомные белки в развивающуюся пре-рибосому в правильном порядке. Результаты их исследования были опубликованы в Интернете в «Molecular Cell.»
Рибосомы представляют собой сложно структурированные клеточные наномашины, состоящие из четырех рибонуклеиновых кислот и примерно 80 различных рибосомных белков (r-белков). Они отвечают за синтез белковых цепей. «Правильное образование рибосом имеет первостепенное значение для деления и размножения клеток. Их структура очень сложна, поскольку все рибосомные белки добавляются к развивающимся пре-рибосомам в строгой последовательности, при этом около 200 белков-помощников помогают в этом процессе», — говорит Эд Хёрт. .
У эукариот новые рибосомы образуются преимущественно в ядре клетки. r-белки, необходимые для их образования, должны перемещаться из клеточной плазмы в место в ядре, где производятся рибосомы, называемое ядрышком. До сих пор ученым было известно только то, что r-белки встраиваются в формирующуюся рибосому в соответствии со строгой иерархией — r-белок B идет после r-белка A и так далее. «Но вопрос о том, как обеспечивается строгая последовательность и кто за это отвечает, остался по большей части без ответа», — поясняет проф.Причинить боль.
Теперь исследователи смогли продемонстрировать, что недавно открытый белок, названный шапероном сборки L4 или Acl4, регулирует упорядоченную интеграцию рибосомного белка L4 в раннюю пре-рибосому. «Здесь используется хорошо известная повседневная концепция, например, швейцар держит сиденье открытым, пока не прибудет нужный пассажир», — объясняет исследователь.
Используя новые исследовательские процедуры, два основных автора публикации, доктор Филипп Стельтер из BZH и Фердинанд Хубер из Калифорнийского технологического института, смогли расшифровать механизм обнаружения между r-белком L4 и развивающейся рибосомой.По мнению исследователей, в основе лежит специфическое для эукариот расширение рибосомного белка L4, которое вступает в контакт с поверхностью рибосомы и высвобождается для сборки вспомогательным белком Acl4. Если этим взаимодействиям препятствует недостаточная продукция r-белка или ошибка в растущей рибосоме, вспомогательный белок остается связанным и предотвращает развитие неисправной рибосомы.
Сотрудничество между исследователями Центра биохимии Гейдельбергского университета и Калифорнийского технологического института дало возможность объединить традиционные и недавно разработанные методы клеточной биологии, биохимии и биофизики.«Это имело решающее значение для детальной характеристики вновь открытых механизмов и участвующих компонентов», — подчеркивает Эд Хёрт.
Источник истории:
Материалы предоставлены Heidelberg, Universität . Примечание. Содержимое можно редактировать по стилю и длине.
Белковая фабрика
Обложка августа в нашем календаре PDBe на 2020 год вдохновлена клеточными машинами по производству белка, называемыми рибосомами.Рибосомы представляют собой очень сложные и важные структуры в клетке, которые выполняют жизненно важную роль в синтезе белка.
Фабрика клеточного белка
Каждая клетка нашего тела содержит около 10 миллиардов белков, которые позволяют нам думать, двигаться, есть, играть и делать многое другое. Их эффективное создание — это работа макромолекулярных машин, называемых рибосомами, которые находятся во всех живых клетках всех видов, от бактерий до человека.
Структура рибосомного комплекса
Глядя на рибосому, она кажется запутанной смесью белков и молекул РНК, однако на самом деле она сшита вместе с безупречной точностью.
Две субъединицы рибосомы собраны вместе с малой и большой субъединицами, показанными в виде лент серого и бирюзового цвета соответственно (запись PDB 6KE0)
Криоэлектронная микроскопия и рентгеноструктурный анализ показали, что рибосома состоит из двух субъединиц: малой и большой субъединиц. Каждая из этих субъединиц образует сложную сеть из нескольких молекул РНК с десятками различных белков. В 2000 году структурные биологи Венкатраман Рамакришнан, Томас А. Стейц и Ада Э.Йонат разрешил первые кристаллические структуры рибосомы с атомарным разрешением. В 2009 году Нобелевская премия по химии была присуждена этим трем исследователям за их исследования структуры и функции рибосомы, что свидетельствует о важности рибосомы.
Синтез белка
Синтез новых белков начинается в ядре, где рибосомы получают команду начать этот процесс. Участки ДНК (гены), кодирующие определенный белок, копируются в нити информационной РНК (мРНК) в процессе, называемом транскрипцией.
После того, как транскрипция ДНК в мРНК завершена, следующим процессом является трансляция, когда эти мРНК считываются для создания белков. Каждая мРНК диктует порядок, в котором аминокислоты должны добавляться к белковой цепи по мере ее синтеза. Если ДНК — это проект, то рибосомы — это каменщики: они строят белок, используя аминокислоты в качестве «кирпичиков».
Для построения белков две рибосомные субъединицы, малая и большая, собираются вместе, образуя полную рибосому.Он имеет сайты связывания для молекул мРНК и транспортной РНК (тРНК). Большая субъединица располагается поверх малой субъединицы, а матрица мРНК зажата между ними. После полной сборки рибосома начинает процесс производства белка.
Производство белка
Двигаясь по мРНК, рибосома считывает набор трехнуклеотидных последовательностей на мРНК, называемый кодоном, который кодирует определенную аминокислоту. ТРНК доставляет эти аминокислоты, строительные блоки белка, к рибосоме.Каждая молекула тРНК имеет два различных конца или участка, один для связывания определенной аминокислоты, а другой для связывания соответствующего кодона мРНК. Во время трансляции эти тРНК переносят аминокислоты к рибосоме и присоединяются к их комплементарным кодонам на мРНК. Впоследствии они транслируются в правильные аминокислоты в новой белковой цепи.
Собранные аминокислоты сшиваются вместе с помощью молекул рРНК (рибосомной РНК), которые направляют процесс создания новой белковой цепи.Повторяя этот процесс для каждой аминокислоты, весь белок строится в процессе, называемом удлинением. Растущая белковая цепь останавливается только тогда, когда встречает стоп-кодон на мРНК. Это сигнализирует об окончании полипептидной цепи во время трансляции. Как только аминокислоты сформированы правильно, вновь синтезированная белковая цепь транспортируется либо в цитоплазму, либо в аппарат Гольджи у прокариот или эукариот соответственно.
Ниже видео от YourGenome, объясняющее этот процесс
Больше, чем белковая фабрика
Точная и быстрая трансляция генетической информации критически важна для производства функциональных белков, обеспечивающих жизнеспособность клеток. Скорость производства белка должна быть быстрой и очень точной, чтобы своевременно реагировать на изменения в окружающей среде. У поразительной точности рибосомного механизма частота ошибок составляет одну на 1000–10 000 аминокислот. Одна рибосома в эукариотической клетке может каждую секунду добавлять к белковой цепи 2 аминокислоты, однако у прокариот рибосомы могут работать еще быстрее, добавляя к полипептиду около 20 аминокислот каждую секунду. Рибосомы потребляют большое количество энергии для синтеза белков и составляют значительную часть клеточной массы, при этом большая часть клеточного метаболизма посвящена производству рибосомных белков и РНК.
Ориентация на бактериальные рибосомы
Рибосомы присутствуют во всех формах жизни и необходимы для синтеза белка, что делает их желанной мишенью для лекарств. Большинство клинически используемых антибиотиков нацелены на рибосомы и ингибируют процесс синтеза белка, вмешиваясь в трансляцию мРНК или блокируя образование пептидных связей.
Бактериальные рибосомы являются одной из основных мишеней для антибиотиков. Эти антибиотики препятствуют синтезу бактериями собственных белков из-за ингибирования их рибосом, что в конечном итоге убивает бактерии.Разработка таких антибиотиков стала возможной благодаря различиям между бактериальными и эукариотическими рибосомами. Они различаются не только по размеру, но также по последовательности и структуре, что позволяет антибиотикам убивать только бактерии, ингибируя их рибосомы, не затрагивая рибосомы человека.
В PDB доступны структуры многих антибиотиков в комплексе с рибосомами. Эти структуры, разрешенные до разрешения на атомном уровне, позволяют нам лучше понять механизм их действия.
Антибиотики, спасающие жизнь
Антибиотики, такие как неомицин, гентамицин и стрептомицин, относятся к группе аминогликозидов, которые широко используются для лечения тяжелых инфекций брюшной полости и мочевыводящих путей. Они ингибируют малую субъединицу рибосомы, включая тетрациклины, которые блокируют связывание тРНК.
Другой широко назначаемый антибиотик, эритромицин, принадлежит к классу натуральных продуктов. Он оказывает два эффекта на трансляцию: во-первых, предотвращает удлинение полипептидной цепи, а во-вторых, ингибирует образование большой рибосомной субъединицы.
На рисунке ниже показан ряд антибиотиков, которые воздействуют на бактериальную рибосому в разных участках большой (голубовато-серый) и малой (желтый) субъединиц рибосомы.
Это изображение взято из книги Бактериальная рибосома как мишень для антибиотиков. Nat Rev Microbiol 3, 870–881 (2005). https://doi.org/10.1038/nrmicro1265
Ингибирование эукариотических рибосом
Некоторые антибиотики, такие как генетицин, также называемый G418, ингибируют стадию элонгации как в прокариотических, так и в эукариотических рибосомах. Рицин, лектин (белок, связывающий углеводы), вырабатываемый в семенах клещевины, является сильнодействующим токсином. Всего несколько крупинок очищенного порошка рицина могут убить взрослого человека. Он ингибирует удлинение путем ферментативной модификации рРНК эукариотической большой рибосомной субъединицы. Другим известным ингибитором эукариотической трансляции является циклогексимид, который обычно используется в лабораториях для ингибирования синтеза белка.
Средства для лечения рака
Биогенез рибосом, процесс создания рибосом, недавно стал эффективной мишенью в терапии рака.Несколько соединений, ингибирующих производство или функцию рибосом, преимущественно убивающих раковые клетки, прошли клинические испытания. Недавние исследования показывают, что клетки экспрессируют гетерогенные популяции рибосом и что состав рибосом может играть ключевую роль в онкогенезе, открывая новые терапевтические возможности.
Об изображении
Два произведения искусства, керамическая скульптура (слева) и изделие из шелкового батика (справа), были созданы Шином Галаутом и Мари Бишофс, 13-летними ученицами школы Персе и колледжа Импингтон-Виллидж соответственно. Оба художника черпали вдохновение в комплексах белков и нуклеиновых кислот в базе данных PDB, а их работы основаны на процессе синтеза белка и рибосомах.
Дипти Гупта
Конвейер сборки рибосомных субъединиц | Genome Biology
Warner JR: Экономика биосинтеза рибосом у дрожжей. Тенденции биохимических наук. 1999, 24: 437-440. 10.1016/С0968-0004(99)01460-7.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Кресслер Д., Линдер П., де Ла Круз Дж. Белок транс — действующие факторы, участвующие в биогенезе рибосом в Saccharomyces cerevisiae .Мол Селл Биол. 1999, 19: 7897-7912.
ПабМед КАС ПабМед Центральный Статья Google ученый
Venema J, Tollervey D: Синтез рибосом в Saccharomyces cerevisiae . Анну Рев Жене. 1999, 33: 261-311. 10.1146/annurev. genet.33.1.261.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Ригаут Г., Шевченко А., Рутц Б., Уилм М., Манн М., Серафин Б.: Общий метод очистки белка для характеристики белковых комплексов и исследования протеома.Нац биотехнолог. 1999, 17: 1030-1032. 10.1038/13732.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Фатика А., Толлерви Д. Создание рибосом. Curr Opin Cell Biol. 2002, 14: 313-318. 10.1016/С0955-0674(02)00336-8.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Фромонт-Расин М., Сенгер Б., Савеану С., Фасиоло Ф. Сборка рибосом у эукариот.Ген. 2003, 313: 17-42. 10.1016/С0378-1119(03)00629-2.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Граннеман С., Басерга С. Дж.: Биогенез рибосом: ручки и процессинг РНК. Разрешение ячейки опыта. 2004, 296: 43-50. 10.1016/j.yexcr.2004.03.016.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Чанг И.Ф., Шик-Миранда К., Пан С., Бейли-Серрес Дж.: Протеомная характеристика эволюционно консервативных и вариабельных белков цитозольных рибосом Arabidopsis .Завод Физиол. 2005, 137: 848-862. 10.1104/стр.104.053637.
ПабМед КАС ПабМед Центральный Статья Google ученый
Джавалиско П., Уилсон Д., Крайтлер Т., Лехрах Х., Клозе Дж., Гобом Дж., Фучини П.: Высокая гетерогенность рибосомных белков рибосомы Arabidopsis thaliana 80S. Завод Мол Биол. 2005, 57: 577-591. 10.1007/s11103-005-0699-3.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Jorgensen P, Nishikawa JL, Breitkreutz BJ, Tyers M: Систематическая идентификация путей, которые связывают рост и деление клеток у дрожжей. Наука. 2002, 297: 395-400. 10.1126/науч.1070850.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Йоргенсен П., Рупес И., Шаром Дж. Р., Шнепер Л., Броуч Дж. Р., Тайерс М.: Динамическая транскрипционная сеть связывает потенциал роста с синтезом рибосом и критическим размером клетки. Гены Дев. 2004, 18: 2491-2505. 10.1101/гад.1228804.
ПабМед КАС ПабМед Центральный Статья Google ученый
Marion RM, Regev A, Segal E, Barash Y, Koller D, Friedman N, O’Shea EK: Sfp1 является чувствительным к стрессу и питательным веществам регулятором экспрессии генов рибосомных белков.Proc Natl Acad Sci USA. 2004, 101: 14315-14322. 10.1073/пнас.0405353101.
ПабМед КАС ПабМед Центральный Статья Google ученый
Rudra D, Zhao Y, Warner JR: Центральная роль взаимодействия Ifh2p-Fhl1p в синтезе рибосомных белков дрожжей. EMBO J. 2005, 24: 533-542. 10.1038/sj.emboj.7600553.
ПабМед КАС ПабМед Центральный Статья Google ученый
Gallagher JE, Dunbar DA, Granneman S, Mitchell BM, Osheim Y, Beyer AL, Baserga SJ: Транскрипция РНК-полимеразы I и процессинг пре-рРНК связаны специфическими компонентами процесса SSU.Гены Дев. 2004, 18: 2506-2517. 10.1101/гад.1226604.
ПабМед КАС ПабМед Центральный Статья Google ученый
Osheim YN, French SL, Keck KM, Champion EA, Spasov K, Dragon F, Baserga SJ, Beyer AL: Pre-18S рибосомальная РНК структурно компактируется в отросток SSU перед тем, как отщепляется от зарождающихся транскриптов в Saccharomyces cerevisiae . Мол Ячейка. 2004, 16: 943-954. 10.1016/j.molcel.2004.11.031.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Harnpicharnchai P, Jakovljevic J, Horsey E, Miles T, Roman J, Rout M, Meagher D, Imai B, Guo Y, Brame CJ и др.: Состав и функциональная характеристика промежуточных продуктов сборки 66S рибосом дрожжей.Мол Ячейка. 2001, 8: 505-515. 10.1016/С1097-2765(01)00344-6.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Saveanu C, Bienvenu D, Namane A, Gleizes PE, Gas N, Jacquier A, Fromont-Racine M: Nog2p, предполагаемая ГТФаза, связанная с пре-60S субъединицами и необходимая для поздних этапов созревания 60S. EMBO J. 2001, 20: 6475-6484. 10.1093/emboj/20.22.6475.
ПабМед КАС ПабМед Центральный Статья Google ученый
Fatica A, Cronshaw AD, Dlakic M, Tollervey D: Ssf1p предотвращает преждевременный процессинг ранней пре-60S рибосомной частицы. Мол Ячейка. 2002, 9: 341-351. 10.1016/С1097-2765(02)00458-6.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Grandi P, Rybin V, Baßler J, Petfalski E, Strauss D, Marzioch M, Schafer T, Kuster B, Tschochner H, Tollervey D и др.: 90S пре-рибосомы включают 35S пре-рРНК, U3 snoRNP и факторы процессинга субъединиц 40S, но преимущественно отсутствуют факторы синтеза 60S.Мол Ячейка. 2002, 10: 105-115. 10.1016/С1097-2765(02)00579-8.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Nissan TA, Baßler J, Petfalski E, Tollervey D, Hurt E: образование пре-рибосомы 60S, вид от сборки в ядрышке до экспорта в цитоплазму. EMBO J. 2002, 21: 5539-5547. 10.1093/emboj/cdf547.
ПабМед КАС ПабМед Центральный Статья Google ученый
Oeffinger M, Dlakic M, Tollervey D: Для экспорта обеих рибосомных субъединиц необходим пре-рибосомный белок HEAT-repeat.Гены Дев. 2004, 18: 196-209. 10.1101/гад.285604.
ПабМед КАС ПабМед Центральный Статья Google ученый
Link AJ, Eng J, Schieltz DM, Carmack E, Mize GJ, Morris DR, Garvik BM, Yates JR: Прямой анализ белковых комплексов с помощью масс-спектрометрии. Нац биотехнолог. 1999, 17: 676-682. 10.1038/10890.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Lee SW, Berger SJ, Martinovic S, Pasa-Tolic L, Anderson GA, Shen Y, Zhao R, Smith RD: Прямой масс-спектрометрический анализ интактных белков большой рибосомной субъединицы дрожжей с использованием капиллярной ЖХ/FTICR.Proc Natl Acad Sci USA. 2002, 99: 5942-5947. 10.1073/пнас.082119899.
ПабМед КАС ПабМед Центральный Статья Google ученый
Луи Д.Ф., Ресинг К.А., Льюис Т.С., Ан Н.Г.: Масс-спектрометрический анализ 40 S рибосомных белков из фибробластов Rat-1. Дж. Биол. Хим. 1996, 271: 28189-28198. 10.1074/jbc.271.45.28189.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Одинцова Т.И., Мюллер Е.С., Иванов А.В., Егоров Т.А., Бинерт Р., Владимиров С.Н. , Костка С., Отто А., Виттманн-Либольд Б., Карпова Г.Г. Характеристика и анализ посттрансляционных модификаций белков большой цитоплазматической рибосомной субъединицы человека масс-спектрометрией и секвенированием по Эдману.J Protein Chem. 2003, 22: 249-258. 10.1023/А:1025068419698.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Баракат А., Шик-Миранда К., Чанг И.Ф., Гайо Р., Блан Г., Кук Р., Делсени М., Бейли-Серрес Дж.: Организация генов цитоплазматических рибосомных белков в геноме Arabidopsis . Завод Физиол. 2001, 127: 398-415. 10.1104/стр.127.2.398.
ПабМед КАС ПабМед Центральный Статья Google ученый
Williams AJ, Werner-Fraczek J, Chang IF, Bailey-Serres J: Регулируемое фосфорилирование 40S рибосомного белка S6 в кончиках корней кукурузы.Завод Физиол. 2003, 132: 2086-2097. 10.1104/стр.103.022749.
ПабМед КАС ПабМед Центральный Статья Google ученый
Сенгупта Дж., Нильссон Дж., Гурски Р., Спан К.М., Ниссен П., Франк Дж.: Идентификация универсального каркасного белка RACK1 на эукариотической рибосоме с помощью крио-ЭМ. Nat Struct Mol Biol. 2004, 11: 957-962. 10.1038/nsmb822.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Dez C, Tollervey D: Синтез рибосом соответствует клеточному циклу.Curr Opin Microbiol. 2004, 7: 631-637. 10.1016/j.mib.2004.10.007.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Граннеман С., Басерга С.Дж.: Перекрестные помехи в экспрессии генов: сопряжение и ко-регуляция транскрипции рДНК, сборка пре-рибосом и процессинг пре-рРНК. Curr Opin Cell Biol. 2005, 17: 281-286. 10.1016/j.ceb.2005.04.001.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Fatica A, Tollervey D, Dlakic M: PIN-домен Nob1p необходим для расщепления D-сайта в 20S пре-рРНК. РНК. 2004, 10: 1698-1701. 10.1261/РНК.7123504.
ПабМед КАС ПабМед Центральный Статья Google ученый
Бернштейн К.А., Басерга С.Дж.: Процессом малых субъединиц необходим для прогрессирования клеточного цикла на стадии G1.Мол Биол Селл. 2004, 15: 5038-5046. 10.1091/mbc.E04-06-0515.
ПабМед КАС ПабМед Центральный Статья Google ученый
Steitz TA: На структурной основе образования пептидной связи и устойчивости к антибиотикам из атомных структур большой рибосомной субъединицы. ФЭБС лат. 2005, 579: 955-958. 10.1016/j.febslet.2004.11.053.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Nissan TA, Galani K, Maco B, Tollervey D, Aebi U, Hurt E: Пре-рибосома со структурой, подобной головастику, функционирует при АТФ-зависимом созревании субъединиц 60S.Мол Ячейка. 2004, 15: 295-301. 10.1016/j.molcel.2004.06.033.
ПабМед КАС Статья Google ученый
Дорога к рибосомам | Журнал клеточной биологии
Транспорт белков и РНК между ядром и цитоплазмой осуществляется растворимыми транспортными факторами, которые связывают свои грузы и переносят их через многочисленные поры, встроенные в ядерную оболочку. Внутри пор находятся огромные макромолекулярные сборки, называемые комплексами ядерных пор (NPC), которые действуют как привратники ядра (Wente 2000).NPC свободно допускают диффузию небольших молекул (таких как вода и ионы), но исключают все макромолекулы размером выше предела диффузии (∼9 нм), за исключением тех, которые несут специфические ядерно-цитоплазматические последовательности-мишени. Т.о., белки, несущие последовательность ядерной локализации (NLS), могут специфически импортироваться через NPC, в то время как макромолекулы, которые должны быть экспортированы из ядра, содержат последовательности ядерного экспорта (NESs). Сигналы распознаются кариоферинами (сокращенно капс, также известными как импортины, экспортины и транспортины; Mattaj and Englmeier 1998).Капы связываются с сигналами импорта или экспорта в своих грузах, обеспечивают стыковку этих грузов с NPC и сопровождают их через поры. GTPase Ran также необходима для ядерно-цитоплазматического обмена. Ran поддерживается кофакторами в его GTP-связанном состоянии в ядре и в его GDP-связанной форме в цитоплазме. Это распределение создает градиент энергии в NPC, приводя в действие ядерно-цитоплазматический транспорт, а также может использоваться транспортными факторами для определения того, на какой стороне NE они находятся.Таким образом, образование импортного комплекса между капом и его грузом стабильно в присутствии цитоплазматического Ran-GDP, но в нуклеоплазме Ran-GTP запускает его разборку.
Напротив, образование экспортного комплекса стабилизируется в ядре с помощью Ran-GTP, но когда этот комплекс достигает цитоплазмы, GTP на Ran гидролизуется и комплекс разбирается. Теперь ясно, что существуют разные транспортные пути, использующие разные родственные каппы. У дрожжей есть по крайней мере 14 структурно родственных кариоферинов, которые опосредуют импорт и экспорт различных классов молекул, и это число, вероятно, значительно выше у многоклеточных животных (Wozniak et al.1998). Таким образом, многие различные, но частично повторяющиеся и перекрывающиеся транспортные пути сходятся в NPC. Одним из наиболее активно используемых путей является экспорт рибосомных субъединиц.
Предварительное изготовление субкомплекса рибосомного белка, необходимого для образования эукариотических рибосом
[…]
Основные версии:
1) С помощью вестерн-анализа важно показать, что неспособность сверхэкспрессированных каталитически мертвых fab1-7 подавлять истощение Tsr2 не является тривиальным результатом его неспособности накапливаться в клетках.
Это важный контроль, позволяющий исключить возможность того, что каталитически неактивный Fap7 нестабилен in vivo и, следовательно, не способен восстановить наблюдаемые фенотипы, связанные с истощением Tsr2. С этой целью был проведен вестерн-анализ лизатов цельных клеток, полученных из клеток с истощенным Tsr2, сверхэкспрессирующих Fap7 и каталитически неактивный fap7-2. Эти исследования показывают, что сверхэкспрессированный каталитически неактивный белок Fap7-2 накапливается до уровней, сравнимых с таковыми при сверхэкспрессии Fap7 дикого типа (рис. 4F, левая панель).
2) Важно попытаться продемонстрировать, например, по анализу coIP, eS26 накапливается в комплексе со своим импортином в Tsr2-истощенных клетках, что устраняется ко-гиперэкспрессией Fap7 и uS11.
В соответствии с запросом мы попытались с помощью анализа CoIP решить конкретную проблему, поднятую рецензентом 3, пункт 1.
Сначала мы проанализировали уровни белка eS26-FLAG в WT, клетках с истощением по Tsr2 и клетках с истощением по Tsr2, ко-избыточно экспрессирующих FAP7 и uS11 . Как и ожидалось, в экстрактах цельных клеток (WCE) уровни eS26-FLAG были сильно снижены при делеции Tsr2, которые восстанавливались при совместной сверхэкспрессии FAP7 и uS11 (изображение ответа автора 1A).
( A ) Экстракты цельных клеток (WCE) готовили из указанных штаммов и подвергали вестерн-анализу с использованием антител, направленных против Pse1 и Kap123.US7 служил контролем загрузки. ( B ) eS26-FLAG был выделен из указанных штаммов. Равные уровни eS26-FLAG загружали и разделяли на SDS-гель и подвергали вестерн-анализу с использованием указанных антител.
https://doi.org/10.7554/eLife.21755.013 Затем мы иммунопреципитировали S26-FLAG из этих клеток (изображение ответа автора 1B). Мы загрузили равные количества eS26-FLAG, выделенных из каждой из этих клеток, на SDS-гель и провели вестерн-анализ для мониторинга совместного обогащения импортином (Pse1 и Kap123) (изображение ответа автора 1B). Однако нам не удалось совместно обогатить обнаруживаемые уровни Pse1 и Kap123 в этих IP. Одним из возможных объяснений может быть то, что в устойчивом состоянии только небольшое количество eS26, ниже уровней обнаружения наших западных анализов, связано с его импортином во время переноса в ядро. Альтернативно возможно, что комплексы импортин:eS26 распадаются при лизисе клеток.
В ответ на конкретное предложение в Обсуждении, которое подверглось критике со стороны рецензента 3 (пункт 1), мы хотели бы уточнить нашу идею относительно функции Tsr2.Наша модель, представленная в Schütz et al., 2014 eLife , была основана на сочетании результатов исследований in vitro и in vivo. В этом исследовании мы показали, что комплексы импортин:eS26, в отличие от типичных комплексов импортин:карго, неэффективно диссоциируют с помощью RanGTP in vitro. Вместо этого мы обнаружили, что Tsr2 без помощи RanGTP эффективно высвобождает eS26 из своего импортина и предотвращает его агрегацию in vitro. in vivo истощение Tsr2 делает eS26 восприимчивым к протеолизу и препятствует его включению в пре-рибосому 90S.На основании этих и других данных мы предложили модель, в которой Tsr2 запускает высвобождение eS26 из его импортина в ядре и, следовательно, напрямую связывает процесс ядерного импорта и переноса eS26 в 90S.
В текущем исследовании мы выявили, как Fap7 и uS11 могут компенсировать потребность в Tsr2 как in vitro, так и in vivo. Конкретно:
A) Рекрутирование Fap7:uS11 в комплекс Pse1:eS26 делает полученный комплекс Pse1:eS26:uS11:Fap7 чувствительным к RanGTP-зависимой разборке in vitro.
B) Сверхэкспрессия Fap:uS11 восстановила уровни eS26 in vivo и обеспечила безопасный перенос eS26 на 90S у мутанта с истощением Tsr2.
Мы согласны с рецензентом 3 в том, что наше предложение в разделе «Обсуждение» «Совместная сверхэкспрессия FAP7 и uS11 обходит требование Tsr2 при извлечении eS26 из его импортина и безопасном переносе r-белка в 90S». не точно сформулировано. Поэтому мы исправили это следующим образом: «Комплекс Fap:uS11 с помощью RanGTP обходит потребность Tsr2 в извлечении eS26 из его импортина in vitro.Совместная сверхэкспрессия FAP7 и uS11 обходит функциональное требование Tsr2 для безопасного переноса r-белка на 90S in vivo».
3) Относительные отношения h33 к eS26 на дорожках 8-13 на рисунке 5B должны быть определены количественно.
4) Важно исследовать, способен ли меченый из eS26 взаимодействовать с h33 в отсутствие S11, возможность, на которую настоятельно указывают данные на рисунке 5B.
Мы повторили анализы связывания, представленные на рисунке 5B (см. рисунок 5C).В частности, мы включили контроли для прямого сравнения и количественной оценки уровней рРНК h33, связанных с комплексами GST-uS11 и GST-uS11:eS26. Эти исследования показали, что в присутствии Fap7 и АТФ почти идентичные уровни рРНК h33 рекрутируются в комплексы GST-uS11 и GST-uS11:eS26 (рис. 5C, сравните дорожки 5 и 7 и количественную оценку). Кроме того, в соответствии с запросом мы проверили, взаимодействует ли меченая версия eS26 (GST-eS26) с рРНК h33 в отсутствие uS11. Мы не смогли обнаружить никакого взаимодействия между GST-eS26 и РНК h33 (рис. 5C, дорожка 1-2).
Вместе эти данные убедительно подтверждают идею о том, что рРНК h33 специфически взаимодействует с комплексом GST-uS11:eS26 через uS11. Эти эксперименты были включены в подраздел «Результаты» «Активность АТФазы Fap7 организует и рекрутирует субкомплекс uS11:eS26 в спираль 23 18S рРНК».
Рецензент №1:
[…]Общая критика: Результаты представляют собой сильное сочетание генетики и биохимии, а также анализов in vivo и in vitro, которые в основном подтверждают основные выводы статьи, и статья в основном хорошо написана.Относящиеся только к одному аспекту биогенеза рибосом, результаты, вероятно, будут иметь более широкое значение для других этапов сборки рибосом. Есть два экспериментальных недостатка, которые следует исправить, и несколько неясных отрывков, которые следует пересмотреть.
Подраздел «Ко-сверхэкспрессия Fap7 и r-белка uS11 обходит требование in vivo для Tsr2», второй абзац: не было указано, были ли высококопийные плазмиды субклонированы и повторно протестированы для подтверждения того, что FAP7 и гены uS11 были ответственны за наблюдаемую супрессию.Это потребуется.
Это действительно было выполнено. Теперь мы включили заявление о том, что генов FAP7 и генов uS11 были субклонированы в высококопийные плазмиды, и их способность восстанавливать фенотипы, связанные с истощением Tsr2, была повторно проверена и подтверждена (Результаты, подраздел «Ко-гиперэкспрессия Fap7 и r-белок uS11 обходит in vivo потребность в Tsr2», второй абзац).
Подраздел «АтФазная активность Fap7 необходима для обхода требования Tsr2», последний абзац: Необходимо показать, что белок fap7-2 накапливается до уровней, сравнимых с уровнями Fap7 дикого типа, чтобы обосновать утверждение о том, что потеря каталитической активности лежит в основе потери подавление.
Мы благодарим рецензента за указание на этот важный элемент управления. См. наш ответ выше в разделе «Основные изменения» (пункт 1).
Рецензент №2:
[…]На мой взгляд, эксперименты подтверждают модель авторов. Рукопись можно улучшить следующим образом:
1) Введение, второй абзац: я не думаю, что 200 коэффициентов сборки требуются для сборки крупного блока; скорее ближе к 80.Могут ли авторы перепроверить это число?
Приносим извинения за эту ошибку и исправили номер. Действительно, путь сборки 60S требует ~80 факторов сборки (Введение, второй абзац).
2) Введение, последний абзац, и Обсуждение, первый абзац: утверждения подразумевают, что все r-белки собираются перед экспортом в ядро. Авторы заявляют, что частицы избегают ядерной проверки в отсутствие Fap7. Возможно, это деталь для этой работы, но они должны уточнить, что некоторые другие r-белки собираются в цитоплазме клеток дикого типа, но S11 и S26 входят в число большинства, которые собираются в ядре.
Мы согласны с тем, что наши утверждения, по-видимому, подразумевают, что все r-белки собраны в ядре. Это явно не так. Теперь мы перефразировали эти предложения (Введение, четвертый абзац и Обсуждение, первый абзац) и ясно заявляем, что мы имеем в виду только те r-белки, которым необходимо войти в ядро для включения в развивающуюся пре-рибосому.
3) Авторы могут добавить в Обсуждение:
Как их работа расширяет и/или противоречит предыдущей работе, описывающей, как Fap7 помогает S11 собираться с рРНК, например.g., работа Loc’h et al.
Кроме того, можно кратко сравнить и сопоставить их идеи относительно S11 и S26 с опубликованными моделями включения r-белка L4 его шапероном, например, где или как Fap7 распознает и связывает S11.
Мы благодарим рецензента за этот комментарий, который помог улучшить наше обсуждение. Теперь мы включили сравнение нашего исследования с исследованиями Loc’h et al. и добавил раздел, в котором наши результаты помещаются в контекст того, как включается uL4 (подраздел «Fap7 готовит субкомплекс uS11: eS26 для сборки рибосомы», последний абзац).
4) Подраздел «Два различных механизма извлечения eS26 из механизма импорта», последний абзац: для пояснения обсуждения могут ли авторы заявить заранее, что существование основных и второстепенных пулов комплекса Fap7-S11 и их соответствующие роли в сборке основана ли модель на результатах, изложенных в статье, в частности, на подавлении фенотипов истощения Tsr2 дополнительными копиями обоих генов, а также генов S11 и FAP7?
Теперь мы четко заявили, что наша модель основана на наших данных о генетической супрессии (подраздел обсуждения «Два различных механизма извлечения eS26 из механизма импорта», последний абзац).
Рецензент №3:
[…]1) Авторы пишут: «Ко-сверхэкспрессия FAP7 и uS11 позволяет обойти потребность в Tsr2 при извлечении eS26 из его импортина и безопасном переносе r-белка в 90S». На самом деле это не показано, но основано на экстраполяции результатов in vitro .
Наша модель функции Tsr2, представленная Schütz et al. , 2014 eLife , основана на сочетании результатов исследований in vitro и in vivo.В этом исследовании мы показали, что комплексы импортин:eS26, в отличие от типичных комплексов импортин:карго, неэффективно диссоциируют с помощью RanGTP in vitro. Вместо этого мы обнаружили, что Tsr2 без помощи RanGTP эффективно высвобождает eS26 из своего импортина и предотвращает его агрегацию in vitro. Истощение Tsr2 in vivo делает eS26 восприимчивым к протеолизу и препятствует его включению в пре-рибосому 90S. Основываясь на этих и других данных, мы предположили, что Tsr2 запускает высвобождение eS26 из его импортина в ядре и, следовательно, напрямую связывает процесс ядерного импорта и переноса eS26 в 90S.
Здесь мы показываем, как Fap7 и uS11 могут компенсировать потребность в Tsr2 как in vitro, так и in vivo. Конкретно:
A) Рекрутирование Fap7:uS11 в комплекс Pse1:eS26 делает полученный комплекс Pse1:eS26:uS11:Fap7 чувствительным к RanGTP-зависимой разборке in vitro.
B) Сверхэкспрессия Fap:uS11 восстановила уровни eS26 in vivo и обеспечила безопасный перенос eS26 на 90S у мутанта с истощением Tsr2.
Мы согласны с рецензентом в том, что наше предложение в разделе «Обсуждение» «Совместная сверхэкспрессия FAP7 и uS11 обходит требование Tsr2 при извлечении eS26 из его импортина и безопасном переносе r-белка в 90S.» не совсем точно отражает эти результаты. Поэтому мы исправили предложение следующим образом: «Комплекс Fap:uS11 с помощью RanGTP обходит потребность Tsr2 в извлечении eS26 из его импортина in vitro. Совместная сверхэкспрессия FAP7 и uS11 обходит функциональное требование Tsr2 для безопасного переноса r-белка на 90S in vivo».
Накапливается ли eS26 в комплексе с его импортином в клетках, истощенных по Tsr2, и восстанавливается ли это за счет сверхэкспрессии Fap7 и uS11? Это должно быть протестировано in vivo с помощью co-IP.
См. наш ответ выше в разделе «Основные версии» (пункт 2).
Этот момент важен не только для обоснования этого утверждения, но и потому, что это основной вывод работы, которая почти полностью основана на анализе in vitro .
Мы вежливо не согласны с мнением этого рецензента относительно основного вывода этой работы. Основным выводом этого исследования является то, что АТФаза Fap7 объединяет взаимодействия uS11 и eS26 через нативные третичные контакты, и ее АТФазная активность необходима для интеграции предварительно сформированного комплекса uS11:eS26 в 90S.Это обеспечивает стехиометрическую интеграцию uS11 и eS26 в пре-рибосому 90S. Различные линии генетических, клеточно-биологических и биохимических данных in vitro / in vivo подтверждают этот вывод. Конкретно:
A) Истощение Tsr2 ставит под угрозу стабильность eS26 и препятствует интеграции uS11 в 90S. Истощение Fap7 ставит под угрозу стабильность uS11 и препятствует интеграции eS26 в 90S. Эти данные in vivo демонстрируют взаимозависимость eS26 и uS11 для их включения в 90S.
B) Вместе с приведенными выше данными и специфическим генетическим взаимодействием между Tsr2 и Fap7:uS11 (данные по супрессии) мы показали, что Fap7 организует комплекс uS11:eS26 посредством третичных контактов и что его АТФазная активность необходима для загрузки этого комплекса на рРНК h33. Важность нативных контактов между uS11:eS26 и важность активности АТФазы Fap7 для загрузки рРНК h33 были подтверждены генетическими, клеточно-биологическими и биохимическими исследованиями in vivo.
2) Рисунок 5B, авторы утверждают, что загрузка uS11 на h33 зависит от Fap7 и рекрутирования eS26.Зависимость от Fap7 довольно хорошая, но сохранение h33, по-видимому, тесно коррелирует с уровнями eS26. Связывается ли h33 с uS11, как заявлено, или с eS26? Относительные отношения h33 к eS26 на дорожках 8-13 должны быть определены количественно. Авторы также должны включать элементы управления eS26 отдельно с h33.
Мы благодарим рецензента за указание на этот важный элемент управления. Пожалуйста, ознакомьтесь с нашим ответом на пункты 3 и 4 в основных редакциях выше.
3) Если uS11 нуждается в Fap7 для своей стабильности, как показано на рисунке 2F, модель независимого импорта uS11 кажется маловероятной.Когда uS11 накапливается в цитоплазме клеток pse1-1, связан ли он с Fap7? У них есть совместная интеллектуальная собственность? Если нет, то как представить себе, что uS11 импортируется без Fap7 для его стабилизации?
В соответствии с запросом у нас есть иммунопреципитированный uS11-GFP из клеток дикого типа и клеток pse1-1 (изображение ответа автора 2A). Эти биохимические исследования показывают, что uS11-GFP может совместно обогащать Fap7. Маловероятно, что весь uS11-GFP в цитоплазме связан с Fap7, т. к. ядерное нацеливание GFP-Fap7 не нарушено у мутанта pse1-1 .
( A ) Штаммы дикого типа и pse1-1 , экспрессирующие uS11-GFP, выращивали в синтетических средах при 25°C до середины логарифмической фазы, а затем переводили на 37°C на 4 часа. Затем uS11-GFP подвергали иммунопреципитации и подвергали вестерн-анализу. ( B ) Штаммы дикого типа и prp20-1 , экспрессирующие Fap7-TAP, выращивали в синтетических средах при 25°C до середины логарифмической фазы, а затем сдвигали до 37°С в течение 4 часов.Затем Fap7-TAP очищали и подвергали вестерн-анализу.
https://doi.org/10.7554/eLife.21755.014Точно так же, когда Fap7 накапливается в цитоплазме у мутантов цикла RanGTP, связан ли он с uS11?
В соответствии с запросом у нас есть иммунопреципитированный Fap7-TAP из WT и клеток prp20-1 (изображение ответа автора 2B). Эти биохимические исследования показывают, что Fap7 может совместно обогащать uS11.
Недавно синтезированный uS11 после выхода из транслирующей рибосомы, вероятно, стабилизируется цитоплазматическими факторами до того, как будет захвачен импортинами.Дрожжевые клетки, дефицитные по связанным с рибосомами системам шаперонов NAC и SSB-RAC, которые связываются с вновь синтезированными полипептидами, накапливают несколько агрегатов рибосомных белков (Koplin et al., 2010). Системы шаперонов NAC и SSB-RAC могут связывать uS11 до их транспорта в ядро. По прибытии в ядерный компартмент взаимодействие с Fap7 стабилизирует uS11 и подготавливает r-белок вместе с eS26 к сборке.
4) Рисунок 6. Неясно, какое значение имеет взаимодействие uS11 со многими различными импортинами.Эти белки обычно сильно отрицательно заряжены. Возможно ли, что они просто представляют собой неспецифические электростатические взаимодействия, вызванные высокими концентрациями белка in vitro ?
Мы не смогли протестировать взаимодействие между uS11 и различными импортинами, поскольку uS11 склонен к агрегации, когда он не связан с Fap7. Все исследования взаимодействия между импортинами и комплексами Fap7 и Fap7:uS11 представляют собой хорошо зарекомендовавшие себя анализы связывания в области ядерного транспорта. Эти анализы всегда проводятся в присутствии конкурирующих штаммов E.coli , чтобы свести к минимуму неспецифические взаимодействия.
Почкующиеся дрожжи используют 11 импортинов для доставки различных грузов в ядро. В этом исследовании мы проверили взаимодействие между комплексом Fap7:uS11 и Fap7 со всеми 11 импортинами. Среди 11 импортинов мы наблюдаем различия в связывании. Например, Sxm1, Kap120, Mtr10 и Nmd5 практически не взаимодействуют с Fap7, а также с комплексом Fap7:uS11. Напротив, Msn5 эффективно связывается с Fap7, но довольно слабо с комплексом Fap7:uS11. Наконец, только Pse1 и Kap104 связываются с комплексом Fap7:uS11.Поэтому мы не думаем, что эти взаимодействия являются неспецифическими электростатическими взаимодействиями.
https://doi.org/10.7554/eLife.21755.016Университет Рокфеллера » Исследование показывает, как рибосомы собираются в клетках человека
Сборка рибосом — сложный процесс. Ранние стадии сборки, показанные выше, происходят внутри ядрышка, структуры глубоко внутри ядра клетки.
Авторы и права: Арно Ванден Брок
Всем клеткам нужны рибосомы для производства белков, необходимых для жизни.Эти многокомпонентные молекулярные машины создают сложные белки, сшивая строительные блоки вместе в соответствии с инструкциями, закодированными в матричных РНК клетки. Но сами рибосомы состоят из малых и больших субъединиц, каждая из которых состоит из рибосомных белков и РНК. Прежде чем они смогут производить белки, эти субъединицы должны быть произведены сами.
В новом исследовании ученые из лаборатории Себастьяна Клинге предоставили наиболее подробное представление о том, как собираются вместе малые рибосомные субъединицы человека, сфотографировав их трехмерные портреты на трех разных этапах процесса сборки.Результаты опубликованы в журнале Science.
«Сборка рибосомы подобна оригами», — говорит Клинге, доцент и руководитель лаборатории химии белков и нуклеиновых кислот. «Сегменты РНК и других белков должны быть точно свернуты в четкие шаги. Фундаментальная проблема, которую мы пытаемся понять, заключается в том, как совместно работают белки, известные как факторы сборки, чтобы контролировать каждый этап сборки».
Для исследования исследователи разработали платформу для редактирования генов человека, чтобы пометить факторы сборки рибосом, и разработали новую биохимическую процедуру для преодоления препятствия, связанного с извлечением пре-рибосомных частиц из ядрышка, структуры внутри ядра клетки.Затем эти частицы были визуализированы с помощью криоэлектронной микроскопии, которая выявила их структуру с разрешением, близким к атомному.
Находки подробно описывают, как около 70 факторов сборки объединяются, чтобы создать основу для построения малой субъединицы и направлять каждый шаг ее созревания. Как только их работа выполнена, факторы сборки распадаются, высвобождая зрелую маленькую субъединицу, которую они удерживали внутри.
Три стадии, описанные в исследовании, позволяют лучше понять ключевые молекулярные механизмы, которые приводят к образованию малой субъединицы.